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本研究最核心的发现是首次鉴定并表征了一个全新的核酸酶家族——Ssn(Site-specific single-stranded nuclease)。该家族具有以下革命性特性:
底物特异性:专一且高效地切割单链DNA(ssDNA),对双链DNA(dsDNA)和RNA没有活性。这填补了分子生物学工具库的一个长期空白。
序列特异性:其切割活性是高度序列特异性的,靶向一段被称为 NTS(Neisseria Transformation Sequence)的回文序列。
广泛存在性:该家族成员在细菌界中广泛分布,尤其在假单胞菌门(Pseudomonadota)中含量丰富,预示着其具有巨大的应用挖掘潜力。
研究人员以脑膜炎奈瑟菌(Neisseria meningitidis)中的同源蛋白为模型,进行了深入的功能机制研究。
SsnA蛋白:
是一个小型的(94个氨基酸)、单结构域的蛋白质,属于 GIY-YIG超家族中的 cd10448家族(此前功能未知)。
其三维结构具有GIY-YIG结构域典型的由几个α螺旋包裹的三个反平行β片层的折叠方式。
NTS序列:
是一段约28-30 nt的序列,其核心是一个回文结构(ATTCCC[N8]GGGAAT),能够形成发夹(hairpin)二级结构。
在致病性奈瑟菌(如脑膜炎奈瑟菌和淋病奈瑟菌)基因组中存在数百个拷贝,并且非随机地聚集在重要基因(特别是编码膜蛋白、与宿主互作相关的基因)周围。
研究通过一系列精巧的实验(EMSA凝胶迁移、核酸酶活性测定、分子动力学模拟等)揭示了SsnA的作用机制:
结合与切割:SsnA能特异性结合到以单链形式存在的NTS序列上,并在其上游特定位置(非保守的可变侧翼区)进行切割,释放出约20 nt的片段。
关键特征:
绝对依赖单链:只有当NTS以单链形式存在时,才能被SsnA识别和切割。
方向性:只切割特定方向的NTS序列,其反向互补链无效。
结构序列双重识别:识别过程不仅依赖于发夹结构,也依赖于特定的序列信息。
该研究揭示了SsnA在细菌中的天然生物学功能——调控水平基因转移(HGT)中的自然转化过程。
发现:在脑膜炎奈瑟菌中,敲除ssnA基因后,含有NTS序列的外源DNA的转化(整合)效率显著提高(5倍);而回补或过表达SsnA则抑制这一过程。
机制模型:当外源ssDNA进入细胞后,SsnA会特异性切割其中含有的NTS序列。这种切割会缩短同源重组所需的同源区长度,从而负向调控外源DNA成功整合到基因组的概率。这被认为是细菌基因组动态调控的一种新机制。
研究并未止步于一个蛋白,而是展示了整个Ssn家族的巨大潜力。
家族多样性:
研究发现并验证了来自不同细菌(如N. elongata, Wolbachia pipientis)的Ssn同源蛋白。
这些同源蛋白都具有ssDNase活性,但各自识别和切割略有不同的NTS变体(SRM, Ssn-Related Motif),展示了该家族的特异性多样性。
应用概念验证(Proof-of-Concept):
研究成功演示了SsnA在生物技术中的多种应用场景:
特异性切割RCA产物:能够高效、特异性地切割滚环扩增(RCA)产生的串联体ssDNA,生成预期大小的片段。
程序化切割:通过将NTS序列拆分成两半,证明了可以通过“引导” oligo来可编程地诱导SsnA对目标ssDNA进行切割,原理类似于CRISPR/Cas系统,但作用于ssDNA。
高灵敏度ss检测:开发了一种基于荧光-淬灭的分子信标系统,可用于特异性ssDNA的检测和定量,灵敏度极高。
这项研究具有多重重要意义:
基础科学层面:发现了一个全新的、功能独特的核酸酶家族,揭示了细菌利用位点特异性ssDNase精细调控基因组动态和进化(如自然转化)的新机制。
技术工具层面:为单链DNA操作提供了前所未有的强大工具。Ssn核酸酶家族有望像CRISPR-Cas系统革新dsDNA编辑一样,革新ssDNA的研究与应用。
应用前景:在以下领域具有 immediate 和广阔的应用潜力:
分子诊断:用于开发超灵敏的ssDNA检测方法(如病毒核酸检测)。
合成生物学:用于控制ssDNA中间产物的加工和组装。
基础研究:作为研究ssDNA生物学(如复制、重组、修复)的关键酶学工具。
总之,这项工作不仅是酶学领域的一项重大发现,更开辟了一个全新的工具平台,为生命科学研究和生物技术应用带来了新的机遇。
